原代細胞培養的注意事項主要包括以下幾個方面：

　　

　　1、取材與處理：

　　

　　選擇健康、無感染的組織或器官作為細胞來源，以確保獲得高質量的原代細胞。取材操作要迅速，盡量減少組織在空氣中暴露的時間，避免污染和細胞損傷。例如，對于孕鼠取材，浸泡乙醇時間應控制在1分鐘左右，不能過長，以確保胚胎細胞活性。

　　

　　2、無菌操作：

　　

　　整個取材和培養過程都要嚴格進行無菌操作，操作要求應高于外科手術標準。使用經過滅菌的工具和試劑，實驗者離開超凈臺時，要隨時用肘部關閉工作窗。

　　

　　3、消化與分離：

　　

　　如果采用酶消化法，要根據組織特性選擇合適的消化酶（如膠原酶、胰酶等），并控制好消化時間和溫度。例如，胰酶的溫度應低于37℃，濃度只需平時消化細胞濃度的一半，以避免細胞被過度消化而受損。組織塊法中，組織塊剪碎后接種到培養瓶壁上，要注意組織塊的粘附情況，避免組織塊漂浮起來影響細胞生長。

　　

　　4、培養條件：

　　

　　提供適宜的培養條件，包括溫度、濕度、氧氣濃度、營養物質等。一般來說，動物細胞培養的適宜溫度為36.5℃±0.2℃，二氧化碳濃度為5%，相對飽和濕度為95%。培養液的選擇要根據不同的細胞類型和實驗要求進行。常用的有L/HDMEM、F12DMEM、RPMI1640等。

　　

　　5、觀察與換液：

　　

　　定期觀察細胞的生長狀況，包括細胞形態、貼壁情況、是否有污染等。原代細胞在培養2天后可能會出現細胞液變黃的現象，這是正常現象，是由于細胞在貼壁生長過程中釋放CO2和其他物質導致培養液PH發生改變。根據細胞的生長情況及時換液，一般48~72小時可換液一次。換液時要注意去除漂浮的組織塊和殘留的血細胞。

　　

　　6、傳代與凍存：

　　

　　原代細胞的傳代次數不宜過多，一般不超過3-5次，否則會導致細胞老化和突變。當細胞生長至80%~90%融合時，可以進行傳代或凍存。凍存液的配制要根據具體的細胞類型和實驗室的經驗來確定，常見的配方有10%DMSO+90%胎牛血清等。

　　

　　7、細胞鑒定：

　　

　　有時候獲取的原代細胞可能不是期望的細胞類型，需要進行細胞鑒定。可以通過購買特定的細胞表面標志物抗體或染色試劑來進行鑒定。

　　

　　原代細胞培養需要注意細胞的來源、處理、無菌操作、消化與分離、培養條件、觀察與換液、傳代與凍存以及細胞鑒定等方面。只有嚴格遵守這些注意事項，才能保證原代細胞培養的成功和細胞的質量。